Responsável: Drª Amanda Oliveira

Ementa:

1. Orientações gerais e específicas sobre o cultivo de linhagens celulares;

2. Conceitos de instalações laboratoriais, assepsia, higienização e preparos de insumos, meios, vidraria e reagentes;

3. Equipamentos necessários e regras de uso;

4. Histórico da cultura celular;

5. Cultivo de linhagens primárias;

6. Linhagens neoplásicas;

7. Coleta de células para biologia molecular;

8. Congelamento e preservação de células.

Número de vagas: 6

Responsável: MSc. André Filipe Pastor

                          Drª Georgia Guimarães 

Ementa:

O curso visa demonstrar as técnicas utilizadas para a produção e caracterização de hibridomas produtores de anticorpos monoclonais, utilizados no imunodiagnóstico de doenças infecciosas. Dentre as metodologias existentes, o minicurso será focado em:

1. Eletroforese SDS-PAGE;
2. Manejo de camundongos (imunização, coleta de células peritoneais, eutanásia);
3. Cultivo celular;
4. Fusão celular para produção de hibridomas;
5. ELISA para caracterização dos hibridomas produtores dos anticorpos monoclonais.

Número de vagas: 3

Responsável: MSc. Fábia Cruz

                        MSc. José Valter Silva

Ementa:

Clonagem por recombinação homóloga em levedura: fundamentos, aplicações e vantagens frente aos métodos clássicos de clonagem.

Objetivo:

Capacitar os alunos a realizarem clonagem por recombinação homóloga em levedura, fundamentando seus princípios e apontando suas vantagens em relação aos métodos clássicos de clonagem, a exemplo das técnicas comumente usadas para clonagem em sistema procarioto (Escherichia coli).

Conteúdo programático:

1. Princípios da recombinação homóloga;

2. Desenho de primers para recombinação homóloga;

3. Amplificação de insertos pela Reação em cadeia da polimerase (PCR) Digestão de vetores para recombinação homóloga;

4. Clonagem por recombinação homóloga em levedura;

5. Transformação de Escherichia coli;

6. Ferramentas moleculares para avaliação do sucesso da clonagem .

Número de vagas: 4

Responsável: Drª Tatiany Romão

Ementa:

O curso prático visa treinar os alunos nas principais técnicas básicas requeridas para expressar proteínas recombinantes em sistema procarioto de Escherichia coli

1. Estratégias de clonagem e subclonagem em vetores específicos;
2. Transformação em célula bacteriana de expressão;
3. Maxi indução de síntese proteica em sistema induzido por IPTG;
4. SDS-PAGE;
5. Purificação de proteínas recombinantes por cromatografia de afinidade;
6. Transferência e Imunodetecção.

Número de vagas: 6

Responsável: Dr. Roberto Lins

Ementa:

1. Noções básicas de sistema Unix;
2. Visualização de biomoléculas;
3. Modelagem comparativa e alinhamento tridimensional de proteínas;
4. Campos de força e técnicas de amostragem;
5. Docking molecular;
6. Engenharia de proteínas;
7. Simulação computacional de biomoléculas;
8. Análise de trajetórias moleculares.

 
Número de vagas: 10

Requerimento: Trazer laptop.

Responsável: Drª Sheilla Oliveria

Ementa:

Desenvolvimento dos projetos de pesquisa para alunos de graduação e pós-graduação na área de saúde: Promover conhecimento para construção ou aperfeiçoamento do projeto de pesquisa do aluno, aliando-se lógica e clareza ao pensamento. Introdução do aluno ao conhecimento das técnicas de argumentação, à problemática da linha de pesquisa estudada, bem como auxilio na elaboração, execução, apresentação do projeto de monografia, dissertação/ tese.

Objetivos:

Compreender o processo de produção do conhecimento, identificando as principais etapas do método científico, suas singularidades, especificidades e interfaces.

Elaborar as seguintes etapas do projeto de dissertação:

1. Descrever o processo de produção do conhecimento (necessidades, justificativas);
2. Identificar o tema (situação problemática) e a partir dele descrever / delimitar o objeto de pesquisa;
3. Formular uma pergunta científica;
4. Formular a hipótese;
5. Descrever os objetivos;
6. Estruturar e apresentar o projeto de pesquisas;
7. Escrever caderno de Protocolos dentro das normas;
8. Entender o uso da Comissão de Ética no Uso de Animais e do Comitê de Ética Humano.

Número de vagas: 10

Responsáveis: Dr. Antônio Pereira das Neves Neto

                       Drª Regina Bressan

Ementa:

O curso teórico-prático abordará as principais etapas de preparo de amostras para microcopia eletrônica de transmissão e de varredura, bem como princípios e aplicações da microscopia de fluorescência.

Objetivos:

1. Introduzir conceitos relativos ao funcionamento e aplicações dos principais tipos de microscopia utilizados no estudo de amostras biológicas;

2. Preparar amostras biológicas para microscopia eletrônica de transmissão e de varredura;

3. Introduzir conceitos de microscopia de fluorescência, do uso de sondas fluorescente e de imunomarcação;

4. Preparar amostra biológica para visualização de estruturas celulares através de microscopia de fluorescência;

5. Interpretar micrografias obtidas pelos diferentes tipos de microscopia.

Número de vagas: 8