Responsável: Drª Amanda Oliveira
Ementa:
1. Orientações gerais e específicas sobre o cultivo de linhagens celulares;
2. Conceitos de instalações laboratoriais, assepsia, higienização e preparos de insumos, meios, vidraria e reagentes;
3. Equipamentos necessários e regras de uso;
4. Histórico da cultura celular;
5. Cultivo de linhagens primárias;
6. Linhagens neoplásicas;
7. Coleta de células para biologia molecular;
8. Congelamento e preservação de células.
Número de vagas: 6
Responsável: MSc. André Filipe Pastor
Drª Georgia Guimarães
Ementa:
O curso visa demonstrar as técnicas utilizadas para a produção e caracterização de hibridomas produtores de anticorpos monoclonais, utilizados no imunodiagnóstico de doenças infecciosas. Dentre as metodologias existentes, o minicurso será focado em:
- Eletroforese SDS-PAGE;
- Manejo de camundongos (imunização, coleta de células peritoneais, eutanásia);
- Cultivo celular;
- Fusão celular para produção de hibridomas;
- ELISA para caracterização dos hibridomas produtores dos anticorpos monoclonais.
Número de vagas: 3
Responsável: MSc. Fábia Cruz
MSc. José Valter Silva
Ementa:
Clonagem por recombinação homóloga em levedura: fundamentos, aplicações e vantagens frente aos métodos clássicos de clonagem.
Objetivo:
Capacitar os alunos a realizarem clonagem por recombinação homóloga em levedura, fundamentando seus princípios e apontando suas vantagens em relação aos métodos clássicos de clonagem, a exemplo das técnicas comumente usadas para clonagem em sistema procarioto (Escherichia coli).
Conteúdo programático:
1. Princípios da recombinação homóloga;
2. Desenho de primers para recombinação homóloga;
3. Amplificação de insertos pela Reação em cadeia da polimerase (PCR) Digestão de vetores para recombinação homóloga;
4. Clonagem por recombinação homóloga em levedura;
5. Transformação de Escherichia coli;
6. Ferramentas moleculares para avaliação do sucesso da clonagem .
Número de vagas: 4
Responsável: Drª Tatiany Romão
Ementa:
O curso prático visa treinar os alunos nas principais técnicas básicas requeridas para expressar proteínas recombinantes em sistema procarioto de Escherichia coli
- Estratégias de clonagem e subclonagem em vetores específicos;
- Transformação em célula bacteriana de expressão;
- Maxi indução de síntese proteica em sistema induzido por IPTG;
- SDS-PAGE;
- Purificação de proteínas recombinantes por cromatografia de afinidade;
- Transferência e Imunodetecção.
Número de vagas: 6
Responsável: Dr. Roberto Lins
Ementa:
- Noções básicas de sistema Unix;
- Visualização de biomoléculas;
- Modelagem comparativa e alinhamento tridimensional de proteínas;
- Campos de força e técnicas de amostragem;
- Docking molecular;
- Engenharia de proteínas;
- Simulação computacional de biomoléculas;
- Análise de trajetórias moleculares.
Número de vagas: 10
Requerimento: Trazer laptop.
Responsável: Drª Sheilla Oliveria
Ementa:
Desenvolvimento dos projetos de pesquisa para alunos de graduação e pós-graduação na área de saúde: Promover conhecimento para construção ou aperfeiçoamento do projeto de pesquisa do aluno, aliando-se lógica e clareza ao pensamento. Introdução do aluno ao conhecimento das técnicas de argumentação, à problemática da linha de pesquisa estudada, bem como auxilio na elaboração, execução, apresentação do projeto de monografia, dissertação/ tese.
Objetivos:
Compreender o processo de produção do conhecimento, identificando as principais etapas do método científico, suas singularidades, especificidades e interfaces.
Elaborar as seguintes etapas do projeto de dissertação:
- Descrever o processo de produção do conhecimento (necessidades, justificativas);
- Identificar o tema (situação problemática) e a partir dele descrever / delimitar o objeto de pesquisa;
- Formular uma pergunta científica;
- Formular a hipótese;
- Descrever os objetivos;
- Estruturar e apresentar o projeto de pesquisas;
- Escrever caderno de Protocolos dentro das normas;
- Entender o uso da Comissão de Ética no Uso de Animais e do Comitê de Ética Humano.
Número de vagas: 10
Responsáveis: Dr. Antônio Pereira das Neves Neto
Drª Regina Bressan
Ementa:
O curso teórico-prático abordará as principais etapas de preparo de amostras para microcopia eletrônica de transmissão e de varredura, bem como princípios e aplicações da microscopia de fluorescência.
Objetivos:
1. Introduzir conceitos relativos ao funcionamento e aplicações dos principais tipos de microscopia utilizados no estudo de amostras biológicas;
2. Preparar amostras biológicas para microscopia eletrônica de transmissão e de varredura;
3. Introduzir conceitos de microscopia de fluorescência, do uso de sondas fluorescente e de imunomarcação;
4. Preparar amostra biológica para visualização de estruturas celulares através de microscopia de fluorescência;
5. Interpretar micrografias obtidas pelos diferentes tipos de microscopia.
Número de vagas: 8